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Inserto de glucosa Hexoquinasa PDF, Resúmenes de Bioquímica

Inserto de glucosa hexoquinasa

Tipo: Resúmenes

2019/2020

Subido el 17/06/2020

anny-bautista-1
anny-bautista-1 🇵🇪

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bg1
Glucosa Hexoquinasa FS – Página 1 * Fluid Stable = líquido estable
Glucosa Hexoquinasa FS *
Reactivo para la determinación cuantitativa In Vitro de glucosa en suero, plasma u orina en equipos
fotométricos
Información de pedido
Nº de pedido Tamaño del envase
1 2511 99 10 021 R1
4 x
20 mL
+ R2
1 x 20 mL
+ 1 x
3 mL
Estándar
1 2511 99 10 026 R1
5 x
80 mL
+ R2
1 x 100 mL
1 2511 99 10 023 R1
1 x
800 mL
+ R2
1 x 200 mL
1 2511 99 10 704 R1
8 x
50 mL
+ R2
8 x 12,5 mL
1 2511 99 10 917 R1
8 x
60 mL
+ R2
8 x 15 mL
1 2500 99 10 030 6 x
3 mL
Estándar
Resumen [1,2]
La determinación de la concentración de glucosa en suero o plasma se
emplea especialmente en el diagnóstico y m onitorización terapéutica en la
diabetes m ellitus. Otras aplic aciones son la detección de la hipo glucemia
neonatal, la exclusión de un posible carci noma insular pancreático, así
como la valoración del intercambio de los hidratos de carbono en
diferentes patologías.
Método
Test UV enzimático con hexoquinasa
Principio
Glucosa + ATP HK > glucosa-6-fosfato + AD P
Glucosa-6-fosfato + NAD
+
G6P-DH > gluconato-6-P + NADH + H
+
Reactivos
Componentes y concentraciones
R1: Solución amortiguadora TRIS pH 7,8 100 mmol/L
Mg
2+
4 mmol/L
ATP 2,1 mmol/L
NAD 2,1 mmol/L
R2: Mg
2+
4 mmol/L
Hexoquinasa (HK) 7,5 kU/L
Glucosa-6-fosfatodeshidrogenasa
(G6P-DH) 7,5 kU/L
Estándar: 100 mg/dL (5,55 mmol/L)
Conservación y estabilidad de los reactivos
El reactivo y el estánd ar se pueden conservar a una temperatura de
2 a 8 °C hasta el final del mes de caducidad indicado en el envase,
siempre que se evite la contaminación una vez abiertos los frascos. ¡No se
deben congelar los reactivos! Mantener los reactivos y el estándar
protegidos de la luz.
Advertencias y medidas de precaución
1. Los reactivos contienen a zida de sodio (0,95 g/L) como conservante.
¡No ingerir! Evitar el contacto con la piel y las mucos as.
2. El reactivo 2 contiene material de origen animal. Tratar el producto
como potencialmente infeccioso según las precauciones universales
y la buena práctica de laboratorio.
3. Excepcionalmente pue den obtenerse valores erróneos en muestras
de pacientes con gammapatías [6].
4. Consultar las fichas de seguridad de los reactivos y observar todas
las medidas de precauci ón necesarias para la manipulación de
reactivos de laboratorio. Para un correcto diagnóstico, se recomienda
evaluar los resultados según la historia m édica del paciente, los
exámenes clínicos así como los resultados obtenidos con otros
parámetros.
5. ¡Únicamente para el empleo profesional!
Eliminación de residuos
Obsérvese la normativa legal al respecto.
Equipo adicional necesario
Solución de NaCl 9 g/L
Equipo usual de laboratorio
Preparación de los reactivos
El estándar es listo para usar.
Procedimiento del substrato
Los reactivos son listos para usar.
Procedimiento de medida con reactivo de uso y muestra
Mezclar 4 partes de R1 + 1 parte de R2
(p. ej. 20 mL R1 + 5 mL R2) = reactivo de uso.
Estabilidad al almacenamiento:
3 meses entre 2 y 8 °C
3 semanas entre 15 y 25 °C
¡Proteger los reactivos de uso de la luz directa!
Muestras
Suero, plasma u orina
Separar del contenido celular a más tardar 1 hora después de la toma de
la muestra.
Estabilidad en plasma después de la adición de un inhi bidor glic olítico
(fluoruro, mono-yodo-acetato, manosa) [3]:
2 días de 20 a 25 °C
7 días de 4 a 8 °C
1 día a –20 °C
Estabilidad en s uero (separado del contenido celular, no hemolítico) sin
adición de un inhibidor glicolítico [2,4]:
8 horas a 25 °C
72 horas a 4 °C
Estabilidad en la orina [3]:
2 horas entre 20 y 25 °C
2 horas entre 4 y 8 °C
¡Congelar sólo una vez! ¡Desechar las muestras contam inadas!
Esquema de la prueba
Hay disponibles, a petición, aplicaciones para si stemas automáticos.
Longitud de onda 340 nm, Hg 334 nm , Hg 365 nm
Paso óptico 1 cm
Temperatura de 20 a 25 °C/a 37 °C
Método de medida Respecto blanco de reactivo
Procedimiento del substrato
Blanco Muestra o
Estándar
Muestra o Estándar - 10 µL
Agua destilada 10 µL -
Reactivo 1 1000 µL 1000 µL
Mezclar y incubar 1 – 5 min. entre 20 - 25 °C/37 °C. Leer la absorbancia
A1 y, a continuación añadir:
Reactivo 2 250 µL 250 µL
Mezclar, incubar 5 min. a 37 °C ó 10 min. de 20 a 25 °C. Leer la
absorbancia A2 al cabo de 30 min. comparando con el blanco de reactivo.
A = (A2 – A1) Muestra/EstándarProcedimiento de me dida con reactivo
de uso y muestra
Blanco Muestra o
Estándar
Muestra o Estándar - 10 µL
Agua destilada 10 µL -
reactivo de uso 1000 µL 1000 µL
Mezclar, incubar 5 min. a 37 °C o 10 mi n. de 20 a 25 °C. Leer la
absorbancia al cabo de 30 min. comparando con el blanco de reactivo.
A = A Muestra/Estándar
Nota:
En el procedimiento de medida con reactivo de uso y muestra sólo se
recomienda el pip eteado como modo operativo en equipos de análisis c on
corrección del valor de referencia de las muestras (por ejemplo, medi ante
medición bicromática). En el rango de la longitud de onda, las muestras de
suero y plasma con frecuencia presentan un elevado nivel propio de
extinciones que pueden causar la aparición de falsos valores de glucosa
altos. Los factores de conversión indicados no se pueden emplear en
mediciones bicromáticas.
Cálculo
Con factor
Para calcular la concentración de glucosa se multiplica A c on el
correspondiente factor f de la siguiente tabla:
Procedimiento del substrato f [mg/dL] f [mmol/L]
340 nm 361 20,0
Hg 334 nm 367 20,5
Hg 365 nm 667 37,1
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Glucosa Hexoquinasa FS – Página 1 * Fluid Stable = líquido estable

Glucosa Hexoquinasa FS *

Reactivo para la determinación cuantitativa In Vitro de glucosa en suero, plasma u orina en equipos

fotométricos

Información de pedido

Nº de pedido Tamaño del envase

1 2511 99 10 021 R1 4 x 20 mL + R2 1 x 20 mL

+ 1 x 3 mL Estándar

1 2511 99 10 026 R1 5 x 80 mL + R2 1 x 100 mL

1 2511 99 10 023 R1 1 x 800 mL + R2 1 x 200 mL

1 2511 99 10 704 R1 8 x 50 mL + R2 8 x 12,5 mL

1 2511 99 10 917 R1 8 x 60 mL + R2 8 x 15 mL

1 2500 99 10 030 6 x 3 mL Estándar

Resumen [1,2]

La determinación de la concentración de glucosa en suero o plasma se emplea especialmente en el diagnóstico y monitorización terapéutica en la diabetes mellitus. Otras aplicaciones son la detección de la hipoglucemia neonatal, la exclusión de un posible carcinoma insular pancreático, así como la valoración del intercambio de los hidratos de carbono en diferentes patologías.

Método

Test UV enzimático con hexoquinasa

Principio

Glucosa + ATP HK^ > glucosa-6-fosfato + ADP

Glucosa-6-fosfato + NAD

+ G6P-DH

gluconato-6-P + NADH + H

Reactivos

Componentes y concentraciones

R1: Solución amortiguadora TRIS pH 7,8 100 mmol/L Mg2+^ 4 mmol/L ATP 2,1 mmol/L NAD 2,1 mmol/L R2: Mg2+^ 4 mmol/L Hexoquinasa (HK) (^) ≥ 7,5 kU/L Glucosa-6-fosfatodeshidrogenasa (G6P-DH)

≥ 7,5 kU/L

Estándar: 100 mg/dL (5,55 mmol/L)

Conservación y estabilidad de los reactivos

El reactivo y el estándar se pueden conservar a una temperatura de 2 a 8 °C hasta el final del mes de caducidad indicado en el envase, siempre que se evite la contaminación una vez abiertos los frascos. ¡No se deben congelar los reactivos! Mantener los reactivos y el estándar protegidos de la luz.

Advertencias y medidas de precaución

  1. Los reactivos contienen azida de sodio (0,95 g/L) como conservante. ¡No ingerir! Evitar el contacto con la piel y las mucosas.
  2. El reactivo 2 contiene material de origen animal. Tratar el producto como potencialmente infeccioso según las precauciones universales y la buena práctica de laboratorio.
  3. Excepcionalmente pueden obtenerse valores erróneos en muestras de pacientes con gammapatías [6].
  4. Consultar las fichas de seguridad de los reactivos y observar todas las medidas de precaución necesarias para la manipulación de reactivos de laboratorio. Para un correcto diagnóstico, se recomienda evaluar los resultados según la historia médica del paciente, los exámenes clínicos así como los resultados obtenidos con otros parámetros.
  5. ¡Únicamente para el empleo profesional!

Eliminación de residuos

Obsérvese la normativa legal al respecto.

Equipo adicional necesario

Solución de NaCl 9 g/L Equipo usual de laboratorio

Preparación de los reactivos

El estándar es listo para usar.

Procedimiento del substrato

Los reactivos son listos para usar.

Procedimiento de medida con reactivo de uso y muestra Mezclar 4 partes de R1 + 1 parte de R (p. ej. 20 mL R1 + 5 mL R2) = reactivo de uso. Estabilidad al almacenamiento: 3 meses entre 2 y 8 °C 3 semanas entre 15 y 25 °C ¡Proteger los reactivos de uso de la luz directa!

Muestras

Suero, plasma u orina Separar del contenido celular a más tardar 1 hora después de la toma de la muestra. Estabilidad en plasma después de la adición de un inhibidor glicolítico (fluoruro, mono-yodo-acetato, manosa) [3]: 2 días de 20 a 25 °C 7 días de 4 a 8 °C 1 día a –20 °C Estabilidad en suero (separado del contenido celular, no hemolítico) sin adición de un inhibidor glicolítico [2,4]: 8 horas a 25 °C 72 horas a 4 °C Estabilidad en la orina [3]: 2 horas entre 20 y 25 °C 2 horas entre 4 y 8 °C ¡Congelar sólo una vez! ¡Desechar las muestras contaminadas!

Esquema de la prueba

Hay disponibles, a petición, aplicaciones para sistemas automáticos. Longitud de onda 340 nm, Hg 334 nm, Hg 365 nm Paso óptico 1 cm Temperatura de 20 a 25 °C/a 37 °C Método de medida Respecto blanco de reactivo Procedimiento del substrato Blanco Muestra o Estándar Muestra o Estándar - 10 μL Agua destilada 10 μL - Reactivo 1 1000 μL 1000 μL Mezclar y incubar 1 – 5 min. entre 20 - 25 °C/37 °C. Leer la absorbancia A1 y, a continuación añadir: Reactivo 2 250 μL 250 μL Mezclar, incubar 5 min. a 37 °C ó 10 min. de 20 a 25 °C. Leer la absorbancia A2 al cabo de 30 min. comparando con el blanco de reactivo.

∆A = (A2 – A1) Muestra/Estándar Procedimiento de medida con reactivo de uso y muestra Blanco Muestra o Estándar Muestra o Estándar - 10 μL Agua destilada 10 μL - reactivo de uso 1000 μL 1000 μL Mezclar, incubar 5 min. a 37 °C o 10 min. de 20 a 25 °C. Leer la absorbancia al cabo de 30 min. comparando con el blanco de reactivo. ∆A = A Muestra/Estándar

Nota: En el procedimiento de medida con reactivo de uso y muestra sólo se recomienda el pipeteado como modo operativo en equipos de análisis con corrección del valor de referencia de las muestras (por ejemplo, mediante medición bicromática). En el rango de la longitud de onda, las muestras de suero y plasma con frecuencia presentan un elevado nivel propio de extinciones que pueden causar la aparición de falsos valores de glucosa altos. Los factores de conversión indicados no se pueden emplear en mediciones bicromáticas.

Cálculo

Con factor Para calcular la concentración de glucosa se multiplica ∆A con el correspondiente factor f de la siguiente tabla:

Procedimiento del substrato f [mg/dL] f [mmol/L] 340 nm 361 20, Hg 334 nm 367 20, Hg 365 nm 667 37,

Glucosa Hexoquinasa FS – Página 2 844 2511 10 06 00 Febrero de 2019/

Procedimiento de medida con reactivo de uso y muestra f [mg/dL] f [mmol/L] 340 nm 289 16, Hg 334 nm 294 16, Hg 365 nm 535 29,

Con estándar o con calibrador

conc.Est./Cal.[mg/dL ] AEst./Cal.

AMuestra Glucos a[mg/dL] × ∆

Factor de conversión

Glucosa [mg/dL] x 0,05551= Glucosa [mmol/L]

Calibradores y controles

Para la calibración de sistemas fotométricos automáticos se recomienda utilizar el calibrador DiaSys TruCal U. Los valores de calibración se han obtenido por el método de referencia cromatografía de gases – dilución isotópica espectrometría de masas. Para el control de calidad interno deben utilizarse los controles DiaSys TruLab N y P o el TruLab Orina. Cada laboratorio debería establecer medidas correctoras en caso de obtener valores fuera del intervalo preestablecido.

Nº de pedido Tamaño del envase TruCal U 5 9100 99 10 063 20 x 3 mL 5 9100 99 10 064 6 x 3 mL TruLab N 5 9000 99 10 062 20 x 5 mL 5 9000 99 10 061 6 x 5 mL TruLab P 5 9050 99 10 062 20 x 5 mL 5 9050 99 10 061 6 x 5 mL TruLab Orina nivel 1 5 9170 99 10 062 20 x 5 mL 5 9170 99 10 061 6 x 5 mL TruLab Orina nivel 2 5 9180 99 10 062 20 x 5 mL 5 9180 99 10 061 6 x 5 mL

Características

Rango de medida

El test es adecuado para medir concentraciones de glucosa de 2 a 900 mg/dL (0,1 – 50 mmol/L) a 365 nm, o bien concentraciones de 2 a 500 mg/dL (0,1 - 28 mmol/L) a 334/340 nm. Si se sobrepasan estos valores, se recomienda diluir las muestras de suero y plasma en una proporción 1 + 2 con solución de NaCl (9 g/L) y multiplicar por 3 el resultado. Las pruebas de orina tienen que diluirse con agua destilada en una proporción 1 + 10 y el resultado se multiplicará por 11.

Especificidad/Interferencias

No aparecen interferencias con ácido ascórbico en cantidades inferiores a 30 mg/dL, con bilirrubina en cantidades inferiores a 40 mg/dL, con hemoglobina en cantidades inferiores a 500 mg/dL y con lipidemia hasta 2000 mg/dL de triglicéridos. Para más información sobre interferencias, véase Young DS [5].

Sensibilidad del test/límite de prueba

El límite inferior de prueba es de 2 mg/dL (0,1 mmol/L).

Precisión (a 37 °C)

En la serie n = 20

Valor medio [mg/dL]

Desviación estándar [mg/dL]

Coeficiente de variación [%] Muestra 1 65,7 1,39 2, Muestra 2 121 2,54 2, Muestra 3 298 6,57 2,

De un día a otro n = 20

Valor medio [mg/dL]

Desviación estándar [mg/dL]

Coeficiente de variación [%] Muestra 1 91,0 0,86 0, Muestra 2 117 1,07 0, Muestra 3 290 2,28 0,

Comparación de métodos

En la comparación de DiaSys Glucosa Hexoquinasa FS (y) con otro test comercial (x) se obtuvieron los siguientes resultados con 73 muestras: y = 1,00 x + 0,00 mg/dL; r = 0,

Valores de referencia [1]

[mg/dL] [mmol/L] Recién nacidos: Sangre del cordón umbilical

1 h 36 – 99 2,0 – 5, 2 h 36 – 89 2,2 – 4, de 5 a 14 h 34 – 77 1,9 – 4, de 10 a 28 h 46 – 81 2,6 – 4, de 44 a 52 h 48 – 79 2,7 – 4, Niños (en ayunas) de 1 a 6 años 74 – 127 4,1 – 7, de 7 a 19 años 70 – 106 3,9 – 5, Adultos (en ayunas) Suero/Plasma 70 – 115 3,9 – 6,

Orina: ≤ 15 mg/dL (0,84 mmol/L) (A base de un promedio de producción de orina de 1350 mL/día) Cada laboratorio debe comprobar si los valores de referencia indicados son adecuados para sus pacientes y si es necesario, determinar sus propios valores de referencia.

Bibliografía

  1. Thomas L. Clinical Laboratory Diagnostics. 1 a ed., Francfort: TH- Books Verlagsgesellschaft; 1998. pp. 131-7, 1368.
  2. Sacks DB. Carbohydrates. En: Burtis CA, Ashwood ER, editores. Tietz Textbook of Clinical Chemistry. 3 a ed., Filadelfia: W.B Saunders Company; 1999. pp. 750-808.
  3. Guder WG, Zawta B et al. The Quality of Diagnostic Samples. 1 st ed. Darmstadt: GIT Verlag; 2001; p. 30-1, 50-1.
  4. Sacks DB, Bruns DE, Goldstein DE, Mac Laren NK, Mc Donald JM, Parrott M. Guidelines and recommendations for laboratory analysis in the diagnosis and management of diabetes mellitus. Clin Chem 2002; 48: 436-72.
  5. Young DS. Effects of Drugs on Clinical Laboratory Tests. 5th ed. Volume 1 and 2. Washington, DC: The American Association for Clinical Chemistry Press 2000.
  6. Bakker AJ, Mücke M. Gammopathy interference in clinical chemistry assays: mechanisms, detection and prevention. ClinChemLabMed 2007;45(9):1240-1243.

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